VERHOEFF – HISTOKIT PARA COLORACAO ESPECIAL
ERVIEGAS VERHOEFF – HISTOKIT PARA COLORACAO ESPECIAL

VERHOEFF – HISTOKIT PARA COLORACAO ESPECIAL

Verhoeff Kit Código EP-12-20022

  • Quantidade de testes : minimo de 60 testes • Tempo total do procedimento : 45 minutos • Validade do produto : ver frasco • Temperatura de armazenamento : 15 a 25?C (temperatura ambiente) • Equipamentos complementares : Nao necessita Aplicacao Método utilizado para demonstracao de fibras elasticas, colageno e outras estruturas em cortes histológicos. As fibras elasticas serao coradas em azul/preto e o fundo em amarelo. Principio As fibras elasticas sao formadas por uma proteina chamada elastina. Elas costumam ocorrer em lugares como o pavilhao auditivo, o conduto auditivo externo, a trompa de Eustaquio, a epiglote, a cartilagem cuneiforme da laringe e nas artérias elasticas. Normalmente tem uma coloracao amarelada. A elastina se caracteriza por formar fibras mais finas que aquelas formadas pelo colageno. Essas fibras cedem bastante a tracao, mas retornam a forma original quando é cessada a forca. Essa propriedade é responsavel pela manutencao da pressao sangüinea nos periodos de diastole do ventriculo esquerdo, ou seja, quando o sangue nao esta saindo do coracao. As fibras elasticas nao se coram bem com HE, sendo preciso recorrer a outros métodos como a Verhoeff e FucsinaResorcina. Método 1. Desparafinizar as laminas em xilol por 5 minutos. Após, hidratar as laminas em alcool 99%, 95%, 70% e lavar em agua corrente. 2. Secar as laminas. 3. Colocar na secao de tecido 10 gotas do reagente A (ou o suficiente apenas para cobrir o corte) e deixar agir de 15 a 30 minutos. 4. Lavar as laminas em agua corrente por aproximadamente 5 minutos. 5. Para diferenciacao, colocar na secao de tecido 10 gotas do reagente B (ou o suficiente apenas para cobrir o corte) e deixar agir por 15 segundos. Se necessario repetir esta etapa até as fibras elasticas aparecerem. 6. Lavar as laminas em agua corrente por aproximadamente 1 minuto. Efetuar rapida passagem em alcool 95%. 7. Colocar na secao de tecido 10 gotas do reagente C (ou o suficiente apenas para cobrir o corte) e deixar agir por 5 minutos. 8. Lavar as laminas em agua corrente por aproximadamente 1 minuto. 9. Colocar na secao de tecido 10 gotas do reagente D (ou o suficiente apenas para cobrir o corte) e deixar agir por 30 segundos. 10. Desidratar em série de alcool ascendente até o xilol e montar as laminas com ERV-MOUNT. * Quantidade de teste estimada conforme o tamanho do tecido a ser corado, quanto maior o tecido maior sera o volume necessario para realizar a coloracao e menor sera a quantidade de testes. Veja maiores detalhes no verso “INSTRUCÕES GERAIS”. Resultados (veja item coloracao final no verso “INSTRUCÕES GERAIS) Fibras
  •  
  • elasticas............................................................................................................................................................................azul escuro Nucleos..........................................................................................................................................................................................azul/preto Colageno.................................................................................................................................................................................rosa/vermelho Outros elementos..............................................................................................................................................................................amarelo Reagentes A (tampa preta) - Solucao de Verhoeff 30 ml B (tampa amarela) - Cloreto Férrico 30 ml C (tampa branca) - Tiossulfato 30 ml D (tampa vermelha) - Corante de Van Gieson 30 ml Referencias Berg JW. Acid-fastness as a histochemical test J Histochem Cytochem 1953; 1: 436-441 Berg JW. Chemistry of acid-fastness Proc Soc Exp Biol Med 1953; 84: 196-198 Lillie RD. Acetic methylene blue counterstain in staining tissue in acid fast bacilli. Stain Technol 1944; 19-45.

 

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VERHOEFF – HISTOKIT PARA COLORACAO ESPECIAL

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SKU: 10758
Fabricante: ERVIEGAS
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Verhoeff Kit Código EP-12-20022

  • Quantidade de testes : minimo de 60 testes • Tempo total do procedimento : 45 minutos • Validade do produto : ver frasco • Temperatura de armazenamento : 15 a 25?C (temperatura ambiente) • Equipamentos complementares : Nao necessita Aplicacao Método utilizado para demonstracao de fibras elasticas, colageno e outras estruturas em cortes histológicos. As fibras elasticas serao coradas em azul/preto e o fundo em amarelo. Principio As fibras elasticas sao formadas por uma proteina chamada elastina. Elas costumam ocorrer em lugares como o pavilhao auditivo, o conduto auditivo externo, a trompa de Eustaquio, a epiglote, a cartilagem cuneiforme da laringe e nas artérias elasticas. Normalmente tem uma coloracao amarelada. A elastina se caracteriza por formar fibras mais finas que aquelas formadas pelo colageno. Essas fibras cedem bastante a tracao, mas retornam a forma original quando é cessada a forca. Essa propriedade é responsavel pela manutencao da pressao sangüinea nos periodos de diastole do ventriculo esquerdo, ou seja, quando o sangue nao esta saindo do coracao. As fibras elasticas nao se coram bem com HE, sendo preciso recorrer a outros métodos como a Verhoeff e FucsinaResorcina. Método 1. Desparafinizar as laminas em xilol por 5 minutos. Após, hidratar as laminas em alcool 99%, 95%, 70% e lavar em agua corrente. 2. Secar as laminas. 3. Colocar na secao de tecido 10 gotas do reagente A (ou o suficiente apenas para cobrir o corte) e deixar agir de 15 a 30 minutos. 4. Lavar as laminas em agua corrente por aproximadamente 5 minutos. 5. Para diferenciacao, colocar na secao de tecido 10 gotas do reagente B (ou o suficiente apenas para cobrir o corte) e deixar agir por 15 segundos. Se necessario repetir esta etapa até as fibras elasticas aparecerem. 6. Lavar as laminas em agua corrente por aproximadamente 1 minuto. Efetuar rapida passagem em alcool 95%. 7. Colocar na secao de tecido 10 gotas do reagente C (ou o suficiente apenas para cobrir o corte) e deixar agir por 5 minutos. 8. Lavar as laminas em agua corrente por aproximadamente 1 minuto. 9. Colocar na secao de tecido 10 gotas do reagente D (ou o suficiente apenas para cobrir o corte) e deixar agir por 30 segundos. 10. Desidratar em série de alcool ascendente até o xilol e montar as laminas com ERV-MOUNT. * Quantidade de teste estimada conforme o tamanho do tecido a ser corado, quanto maior o tecido maior sera o volume necessario para realizar a coloracao e menor sera a quantidade de testes. Veja maiores detalhes no verso “INSTRUCÕES GERAIS”. Resultados (veja item coloracao final no verso “INSTRUCÕES GERAIS) Fibras
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  • elasticas............................................................................................................................................................................azul escuro Nucleos..........................................................................................................................................................................................azul/preto Colageno.................................................................................................................................................................................rosa/vermelho Outros elementos..............................................................................................................................................................................amarelo Reagentes A (tampa preta) - Solucao de Verhoeff 30 ml B (tampa amarela) - Cloreto Férrico 30 ml C (tampa branca) - Tiossulfato 30 ml D (tampa vermelha) - Corante de Van Gieson 30 ml Referencias Berg JW. Acid-fastness as a histochemical test J Histochem Cytochem 1953; 1: 436-441 Berg JW. Chemistry of acid-fastness Proc Soc Exp Biol Med 1953; 84: 196-198 Lillie RD. Acetic methylene blue counterstain in staining tissue in acid fast bacilli. Stain Technol 1944; 19-45.

 

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